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NK-92MI人恶性非霍奇金淋巴瘤患者的自然杀伤细胞 (STR鉴定)
英文名:NK-92MI
货号:ZQ0435
价格:¥2200.00
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NK-92MI人恶性非霍奇金淋巴瘤患者的自然杀伤细胞 (STR鉴定)

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产品名称

NK-92MI人恶性非霍奇金淋巴瘤患者的自然杀伤细胞

货号

ZQ0435

产品介绍

NK-92细胞是从一位患有急进性非霍奇金淋巴瘤的50岁白人男性外周血单核细胞衍生来的一株IL-2依赖型NK细胞株。NK-92MI细胞是转染得到的源自NK-92细胞的IL-2非依赖的NK细胞株。亲本细胞NK-92通过微粒体基因转化法用逆转录病毒MFG-hIL-2载体携带的人IL-2cDNA进行转化。可能由于载体整合到基因组DNA中,转化是稳定的。这株细胞对很多恶性细胞有细胞毒性;铬释放试验显示它能杀死K562细胞和Daudi细胞。NK-92细胞有以下特征:CD2、CD7、CD11a、CD28、CD45、CD54表面标记阳性;CD1、CD3、CD4、CD5、CD8、CD10、CD14、CD16、CD19、CD20、CD23、CD34和HLA-DR表面标记阴性。其亲本IL-2依赖的细胞株NK-92细胞及另一株同样来源于NK-92细胞株的IL-2非依赖的细胞株NK-92CI都可从ATCC得到。NK-92MI细胞和NK-92CI细胞这两个变种都包含、表达并合成hIL-2cDNA。NK-92MI细胞合成的IL-2水平比NK-92CI高,而亲本细胞不合成表达。1998年9月提交到ATCC的培养物污染了支原体,其后代通过BM细胞周期蛋白处理21天消除支原体。处理后6周,用Hoechst染色、PCR和标准培养测试进行支原体检测,结果都呈阴性。

注意事项:
1)细胞除首次传代需离心收集细胞,后续细胞换液或传代时建议使用半换液法,即换液或传代时待细胞自然沉降后,弃去一半旧培养
液,之后可直接向培养瓶中添加等体积的新鲜培养液,然后将细胞吹打均匀或移入两个新的T25 培养瓶中(1:2传代),补充新的完
全培养基至8-10ml/瓶即可。
2)细胞生长状态呈现细胞聚团生长。细胞在培养过增殖细胞碎片多、颗粒多是正常现象。当细胞密度较大或者培养液变黄时,需要及时
进行半换液或者完全换液。在换液过程中尽量冲散细胞。
3)NK-92MI细胞较难复苏,复苏初期细胞生长缓慢(一周左右),会有部分细胞破碎,会出现大量死细胞和死细胞碎片,培养两周后有
所好转。建议每1-2周对细胞进行1000rpm,离心5 min,弃掉上清,加入新鲜完全培养液,可以去掉部分细胞碎片和颗粒。培养过程
中会出现死细胞和细胞碎片,收到邮寄的活细胞的用户若发现培养物内有部分死细胞和细胞碎片,此为正常现象。细胞碎片不影响细胞
正常生长,中间可换液一次。待细胞恢复正常生长速度后可进行传代培养(半换液法)。由于此细胞复苏周期长生长慢,建议高密度细胞
冻存(T25培养瓶1瓶约含106 细胞量建议冻存1支)
4)请注意保持细胞密度在合适的范围(3x105 ~ 3x106 /ml),不能过稀。

种属

性别/年龄

/50岁

组织

外周血

疾病

淋巴瘤;恶性非霍奇金淋巴瘤

细胞类型

自然杀伤细胞;nk细胞

形态学

淋巴样

生长方式

悬浮;多细胞聚集体

培养基和添加剂

MEMα(中乔新舟  货号:ZQ-800)+12.5%热灭活马血清(中乔新舟 货号:ZQH500+12.5%进口胎牛(中乔新舟 货号:ZQ0500+1%双抗(中乔新舟  货号:CSP006+0.2mM肌醇+0.02mM叶酸+0.1mM β-Mer(中乔品牌 货号:CSP005

推荐完全培养基货号

ZM0435

生物安全等级

BSL-2

STR位点信息

D5S818: 12. 13

D13S317: 9, 12

D7S820: 10, 11

D16S539: 11, 12

vWA: 16, 18

THO1: 6, 9.3

TPOX: 8

CSF1PO: 11, 12

Amelogenin: X, Y

培养条件

95%空气,5%二氧化碳;37℃

抗原表达/受体表达

 ***

基因表达

 ***

保藏机构

ATCC; CRL-2408

供应限制

仅供科研使用


货号

ZQ0435

发货规格

活细胞:T25培养瓶*1瓶或者1ml 冻存管*1支(细胞量约为5 x 10^5 cells/vial)二选一

发货形式

活细胞:常温运输;冻存管:干冰运输

储存温度

活细胞:培养箱;冻存管:液氮罐

产地

中国

供应限制

仅供科研使用

PubMed=10365666; DOI=10.1089/10430349950018030
Tam Y.K., Maki G., Miyagawa B., Hennemann B., Tonn T., Klingemann H.-G.
Characterization of genetically altered, interleukin 2-independent natural killer cell lines suitable for adoptive cellular immunotherapy.
Hum. Gene Ther. 10:1359-1373(1999)


Patent=US8034332
Klingemann H.-G.
Interleukin-secreting natural killer cell lines and methods of use.
Patent number US8034332, 11-Oct-2011


PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017
Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Mironenko T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
Cell 166:740-754(2016)


PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747
Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
Cancer Res. 79:1263-1273(2019)


PubMed=35839778; DOI=10.1016/j.ccell.2022.06.010
Goncalves E., Poulos R.C., Cai Z.-X., Barthorpe S., Manda S.S., Lucas N., Beck A., Bucio-Noble D., Dausmann M., Hall C., Hecker M., Koh J., Lightfoot H., Mahboob S., Mali I., Morris J., Richardson L., Seneviratne A.J., Shepherd R., Sykes E., Thomas F., Valentini S., Williams S.G., Wu Y.-X., Xavier D., MacKenzie K.L., Hains P.G., Tully B., Robinson P.J., Zhong Q., Garnett M.J., Reddel R.R.
Pan-cancer proteomic map of 949 human cell lines.
Cancer Cell 40:835-849.e8(2022)

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